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干貨分享 | 細胞凍存及復蘇避坑指南!

2024-03-28 09:33:42

細胞培養是生命科學實驗中離不開的實驗之***,它有廣泛的應用。細胞培養可以用于研究細胞的信號轉導、合成代謝、生長增殖等。細胞培養的常見實驗包括細胞復蘇、細胞傳代和細胞凍存等,其中細胞凍存及復蘇的過程對于細胞生長狀態有重要影響。

01
細胞凍存
細胞凍存的目的是為了減少細胞代謝,液氮(-196℃)凍存是常用的細胞凍存方法,細胞凍存時應遵循基本原則:控制降溫速率,要緩慢凍存。細胞凍存時,若不加入保護劑直接凍存,會對細胞造成嚴重損傷。如:
  • 局部電解質濃度改變,pH值改變,部分蛋白質變性;

  • 細胞內冰晶形成,可引起溶酶體的損傷使溶解酶釋放,造成細胞內結構成分的破壞、線粒體腫脹、功能喪失并造成細胞能量代謝障礙;

  • 細胞膜上的類脂蛋白復合體在冷凍中易發生破壞引起膜通透性改變,使細胞內容物喪失;

  • 細胞核在冷凍保存時也易受損。


為了降低在細胞凍存時對細胞的損傷,可以在凍存時加入凍存保護劑甘油或二甲基亞砜(DMSO)(SKU:02196055)以降低對細胞損傷或死亡。DMSO作為滲透性細胞保護劑,其能夠迅速穿透細胞膜進入細胞中,防止細胞內液冰晶的形成,以及防止細胞結構紊亂等。

二甲基亞砜(DMSO)結構式


研究表明,不同濃度的DMSO對細胞活力均有影響,DMSO濃度不超過10%時,對細胞的活力影響較小(如圖1)。除此之外,DMSO濃度為10%時,抑菌效果能夠接近***。在DMSO中加入適宜濃度的血清,有助于解凍后提高細胞收獲率和其功能活性的恢復。因此,細胞凍存時常常使用10%濃度的DMSO,可以在其中加入胎牛血清等作為保護劑,血清有助于解凍后細胞功能活性的恢復(如圖2為細胞凍存流程圖)。

圖1. DMSO濃度與細胞活力[1]

圖2. 細胞凍存操作流程圖


細胞凍存注意事項

1. 應選擇生長狀況良好的細胞進行凍存;
2. 凍存時細胞密度不能太低,推薦密度為100-300萬細胞/mL;
3. 凍存液中DMSO對細胞有所損傷,凍存過程要快,加入細胞凍存液后盡快進入降溫程序;
4. 不能將細胞懸液直接放在超低溫下快速冷凍;
5. DMSO屬于致癌物質,使用時應戴好手套,規范操作。
02
細胞復蘇

細胞復蘇是指將凍存在液氮或低溫冰箱中的細胞解凍后重新培養,使其恢復生長的過程。細胞復蘇過程中,需要遵循快速融化的原則,這樣可以保證細胞外結晶短時間內融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內再形成冰晶對細胞造成損傷。細胞復蘇后1-2天,細胞活性會逐漸得到恢復(如圖3為復蘇HEK293T細胞數對數值)。


細胞復蘇的主要實驗過程如下:


  • 步驟1:從液氮容器或低溫冰箱中取出凍存管,迅速將其浸入37℃的溫水中,并不時搖動以使其盡快融化。37℃水浴時間盡可能短(1-2min),因為延長時間會增加細胞死亡率;

  • 步驟2:當細胞完全融化后,從水浴中取出凍存管,用酒精棉球消毒外部,然后開啟瓶蓋;

  • 步驟3:將細胞懸液轉移到離心管中,加入適量的培養液,并進行離心,以去除DMSO和死細胞;

  • 步驟4:離心后,棄去上清液,用新的培養液重懸細胞,并計數,調整細胞密度;

  • 步驟5:將細胞接種到培養瓶中, 37℃靜置培養。在培養初期,應注意觀察細胞狀態,以確保其正常生長。


圖3. HEK-293T細胞生長曲線(復蘇后)[2]

圖4. 細胞復蘇操作流程圖


細胞復蘇注意事項

1. 注意無菌操作,避免細胞污染,可使用支原體去除噴霧劑(SKU:093050853)提前對實驗室環境,培養箱進行處理;
2. 融化細胞時,溫度和時間應嚴格控制,以避免對細胞造成損傷;
3. 在細胞接種后,應定期觀察細胞生長情況,疑似支原體污染時可使用可視化LAMP支原體檢測試劑盒(SKU:0930506)檢測,若發生支原體污染,可使用支原體去除試劑(SKU:0930500)及時處理。

03
總結

細胞凍存及復蘇是細胞培養常見的實驗方法,選擇合適的方法以及合理的操作能夠保證細胞的活性。除此之外,選擇合適的凍存保護劑也是該實驗中較為關鍵的***步,例如DMSO應當選擇內毒素水平低、細胞培養***的產品,能夠降低對細胞的損傷。a

(文章來源于儀器網)

(來源:


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